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      明明凍存的時候細胞長得好好的,怎么一復蘇就完啦?

      更新時間:2025-01-21點擊次數:1111

      不知道大家是否會遇到細胞凍存的時候狀態非常不錯,結果等到需要用到該細胞的時候怎么也復蘇不起來的情況啊?或許可能是凍存細胞的時候出現了什么差錯?


      明明凍存的時候細胞長得好好的,怎么一復蘇就完啦?

      一.細胞凍存的原則:慢凍,細胞在冷凍過程中,如果降溫過快,會形成大的冰晶,這些冰晶會破壞細胞結構,導致細胞死亡。

      詳細版本見《細胞凍存的原理是什么?

      二.凍存液的配置:

      常用配置比例:培養基:血清:DMSO=7:2:1

      適用于大多數細胞系,能夠保證細胞在凍存過程中有較高的存活率。

      血清:DMSO=9:1

      適用范圍:適用于需要長時間保存或者具有特別珍貴性的細胞系。血清含量高,可以更好地保護細胞,并確保其在凍存后依然保持較好的生物學特性。

      無血清凍存液:適用于某些對血清敏感或需要避免血清成分的細胞系。配置比例:如10% DMSO+90%專用無血清培養基,或其他適合細胞生長的無血清替代品。

      凍存注意事項!!!

      詳細版本見《細胞凍存的注意事項

      1.不要將DMSO直接加入含有細胞的培養基中,因為DMSO溶于培養基時會釋放大量熱量,可能燙傷細胞。在加入細胞前,可以將配置好的凍存液放于4℃進行預冷(預冷步驟并非必需)。DMSO在4°C時毒性會大大減弱,且滲透速度加快,有助于保護細胞。

      2.若使用凍存盒進行凍存,必須將凍存盒解凍至室溫(避免溫度驟變對細胞的損傷:如果直接將冷凍的凍存盒從低溫環境取出,并立即打開或處理,細胞會受到溫度驟變的影響。

      溫度的急劇上升可能導致細胞內冰晶的形成或擴大,對細胞膜和細胞器造成機械性損傷,進而影響細胞的存活率。)

      3.把握細胞凍存的密度:應確保細胞處于對數生長期,形態正常,無污染,且細胞密度足夠大,因為凍存和復蘇的過程中不可避免會導致部分細胞死亡。


      細胞凍存的步驟:

       詳細版本見《細胞凍存的實驗步驟


      1.配置好細胞凍存液,置于4℃預冷備用

      2.將待凍存的細胞從培養箱中取出,棄去舊的培養基,PBS洗滌,對于貼壁細胞,加入適量胰酶消化液,將培養皿放入37℃培養箱中消化數分鐘(消化時間根據細胞類型而定)當觀察到細胞大塊大塊地從皿底脫落時,加入等體積的wan全培養基終止消化。離心收集細胞;對于懸浮細胞直接離心收集

      3.向離心管中加入適量的凍存液,用移液器輕輕吹打細胞沉淀,使細胞均勻懸浮于凍存液中。

      4.將重懸后的細胞懸液分裝至無菌凍存管中,凍存管放入-80過夜,次日轉移置液氮保存。


      天津益元利康生物科技有限公司:


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